流式細(xì)胞儀技術(shù),主要是測(cè)量群體中單個(gè)細(xì)胞經(jīng)適當(dāng)染色后其成分所發(fā)出的散射光和熒光,經(jīng)染色的細(xì)胞在懸液中以單行流過(guò)高強(qiáng)度光源的焦點(diǎn),當(dāng)每個(gè)細(xì)胞經(jīng)過(guò)焦點(diǎn)時(shí),發(fā)出一束散射光/或熒光。它們經(jīng)過(guò)過(guò)濾及光鏡系統(tǒng)收集到達(dá)一個(gè)光電檢測(cè)器(光電倍增管或一個(gè)固態(tài)裝置),光檢測(cè)器把散射光定量轉(zhuǎn)化成電信號(hào),經(jīng)數(shù)字轉(zhuǎn)換器進(jìn)行數(shù)字化后而成整數(shù),然后進(jìn)行電子存儲(chǔ),以后數(shù)據(jù)可以調(diào)出顯示和進(jìn)行分析。其優(yōu)點(diǎn)如下:
1、具有操作簡(jiǎn)便,只要將染色的單個(gè)細(xì)胞推入儀器中,就會(huì)得出數(shù)據(jù)。
2、具有較高的靈敏度及測(cè)定速度,而且每次可測(cè)出許多數(shù)據(jù),一般情況下,每秒可測(cè)5000個(gè)細(xì)胞,能迅速分析和記數(shù)大量細(xì)胞,并能準(zhǔn)確統(tǒng)計(jì)群體中熒光標(biāo)記細(xì)胞的比例。
3、應(yīng)用廣泛,即可用于測(cè)定細(xì)胞活力、繁殖周期和細(xì)胞定型分析,也可區(qū)別死亡細(xì)胞、分裂細(xì)胞和靜止細(xì)胞群,既可測(cè)定DNA和RNA、測(cè)凋亡峰,又可測(cè)蛋白含量,特別是胞漿蛋白。
一、樣品的制備
流式細(xì)胞儀是測(cè)定一個(gè)或重復(fù)的每個(gè)顆粒經(jīng)光路的信號(hào),因此,細(xì)胞必須做成單個(gè)細(xì)胞懸浮狀態(tài),不能聚集,也不允許有細(xì)胞碎片存在。所用染料必須特異(如特異單抗),而且不允許滲透至載液中。
標(biāo)本如果是屬于淋巴細(xì)胞等血細(xì)胞、骨髓細(xì)胞或白血病細(xì)胞系或類淋巴細(xì)胞系,要經(jīng)Ficoll分離,作單細(xì)胞分離處理,但若為實(shí)體組織或貼壁生長(zhǎng)的上皮成纖維樣細(xì)胞,需采用酶消化法(胰蛋白酶、膠原酶等),化學(xué)法(EDTA、EGTA和檸檬酸鹽)消化分散液或洗液用無(wú)鈣、鎂PBS,檸檬酸鹽的濃度為40μmol/L,并同時(shí)采用機(jī)械分散法,將經(jīng)消化處理的膨松組織,用玻璃珠懸搖或用吸管吹打分散均可,用PBS洗2~3次后重懸,過(guò)一下尼龍或不銹鋼網(wǎng)篩100μm和20μm。細(xì)胞濃度要保證在1~2×106/ml。
若標(biāo)本用于測(cè)定單個(gè)細(xì)胞,需加入1~5mg/L的DNAase,將有助于阻止破碎細(xì)胞釋放的DNA造成細(xì)胞再聚集,但是若分離的細(xì)胞要作DNA含量測(cè)定之用時(shí),則切勿加DNAase。
二、懸浮細(xì)胞的固定
上述制備的活細(xì)胞即可用于流式細(xì)胞儀分析,如果染色和流式分析要拖后進(jìn)行,或?yàn)榱颂岣呷旧Ч?,則要將細(xì)胞預(yù)固定。乙醇固定是常用的方法。
1、固定方法:
(1)甲醛法:在細(xì)胞懸液中加入等量的8%甲醛(用Hank’S液配)4℃下固定12~18小時(shí)。
(2)乙醇法:細(xì)胞懸于PBS中,緩慢加入-20℃預(yù)冷的95%乙醇,使終濃度為70%,冰浴30分鐘。
(3)丙酮法:于細(xì)胞懸液中,緩慢加入冷丙酮,使終濃度為85%。
2、實(shí)例:
(1)用預(yù)冷的無(wú)鈣、鎂含0.5mmol/L EDTA的磷酸鹽緩沖液,將細(xì)胞制成1×106細(xì)胞的懸液。
(2)在4℃下逐滴加入3倍體積的95%乙醇,連續(xù)攪拌使乙醇終濃度達(dá)70%。
(3)該細(xì)胞可在4℃下保存數(shù)日。
(4)分析前先用1000r/min離心10分鐘,棄去乙醇,再將細(xì)胞懸于PBS中或要求的試劑中。
三、流式細(xì)胞儀分析的應(yīng)用
(一)非染色細(xì)胞的光散射
一個(gè)粒子(如細(xì)胞)出現(xiàn)在一束光線中,立即會(huì)干擾該光束,造成該光束入射光的重分布,該細(xì)胞所獲能量則以衍散、折射、反射等復(fù)雜的參數(shù)形式重新發(fā)射出來(lái),這些參數(shù)與細(xì)胞體積、表面構(gòu)象、內(nèi)部結(jié)構(gòu)形成函數(shù)關(guān)系,可測(cè)低角前面約10°的光散射及90°的光散射。
一般認(rèn)為,90°位置的光散射值主要受細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)所致的光反射和折射影響,而低角前面10°位置的光散射則主要代表細(xì)胞大小。光散射測(cè)量方法如下:
(1)將細(xì)胞懸浮于HBSS中,濃度介于1×106~2×106/ml濃度之間。
(2)以懸浮細(xì)胞平衡鹽溶液(HBSS)充滿含鞘液的細(xì)胞貯藏池。
(3)設(shè)定細(xì)胞流量為500個(gè)/S(秒),以獲得*測(cè)定結(jié)果。
(二)染色法
1、細(xì)胞的碘化丙錠(propiolium iodide,PI)染色
PI和EB(溴化乙錠)為同類物質(zhì),與EB一樣,PI嵌入DNA雙螺旋中,可使熒光強(qiáng)度增加約20倍,PI的熒光強(qiáng)度約為EB染色的1.8倍,以488nm波長(zhǎng)激發(fā),DNA/PI復(fù)合物zui大的發(fā)射波長(zhǎng)約為615nm。
1.1 小鼠Lewis肺癌細(xì)胞(3LL)DNA含量測(cè)定方法
(1)從C57BL/6小鼠上切除腫塊,在培養(yǎng)皿內(nèi)用PBS沖洗;
(2)去除結(jié)締組織及脂肪,剪碎腫塊;
(3)小碎片移入1.20×38mm注射針,加壓使其通過(guò),于4℃條件下重懸細(xì)胞于HBSS中。
(4)將200~300μL細(xì)胞懸液(5×105細(xì)胞/ml)中加入3ml PI(50μg/ml),染色3LL細(xì)胞,于4℃存放20~30分鐘。
(5)測(cè)定580~750nm之間的發(fā)射熒光,以去除末結(jié)合PI產(chǎn)生的激發(fā)光與發(fā)射光譜線之間的重疊部分。
注:PI染色液:0.1%檸檬酸鈉1000ml+PI5mg+1%Nonide P40水。
1.2 培養(yǎng)細(xì)胞DNA的流式細(xì)胞儀分析
(1)從培養(yǎng)皿中吸去培養(yǎng)基,以HBSS沖洗二次;
(2)加入PI5ml于培養(yǎng)皿中,在4℃放10分鐘;
(3)用吸管反復(fù)次打細(xì)胞,使細(xì)胞破壞,胞核釋放出來(lái),再行流式細(xì)胞儀分析。
1.3 完整細(xì)胞DNA的PI染色
(1)70%乙醇固定的細(xì)胞懸液,離心,去固定液;
(2)室溫條件下加入PI染色一批細(xì)胞(105~106細(xì)胞/ml),時(shí)間為30分鐘,然后行流式細(xì)胞儀分析。
1.4 光輝霉素和PI的DNA染色
在熒光抗生素光輝霉素和PI聯(lián)合染色過(guò)程中,光輝霉素的供體分子被PI的受體分子接受產(chǎn)生能量轉(zhuǎn)移,該染色技術(shù)主要用于實(shí)體腫瘤組織,精子細(xì)胞及婦科標(biāo)本,同時(shí)也適用于體外培養(yǎng)的細(xì)胞。
(1)分離制備的細(xì)胞懸液即可使用,若用70%乙醇固定可保存一周。
(2)以PI/光輝霉素染色,4℃1小時(shí)(PI為10mg/L、光輝霉素為10mg/L)。
(3)染色后進(jìn)樣,以100W汞燈作為激光光源,使用BG123nm阻斷濾片,疊加K590型高通濾法(one seep filter)。
2、DNA和RNA的鑒別染色
利用吖啶橙的變色特性可鑒別DNA和RNA。吖啶橙作為一種熒光染料已被用于染色固定,非固定細(xì)胞核酸,或作溶酶體的一種標(biāo)記。觀察死亡細(xì)胞熒光變色性變化以及區(qū)別分裂細(xì)胞和靜止細(xì)胞群體。雖然測(cè)定DNA和RNA含量時(shí)較難獲得好的重復(fù)性結(jié)果,但該方法已被許多實(shí)驗(yàn)室廣泛采用。方法如下:
(1)試劑:
溶液A:低溫保存,穩(wěn)定期約2周。
Triton X-100(0.1%0.1ml,1mol/LHCL 8ml
1mol/LNaCI15ml蒸餾水76ml,PH1.5(100ml)
溶液B:穩(wěn)定期數(shù)月,除菌以后(高壓或過(guò)濾)貯存。
0.01mol/LEDTA10ml,1mol/LNaCI15ml
0.4mol/LNa2HPO4 31.5ml,0.2mol/L檸檬酸18.5ml
蒸餾水24ml,總體積為99ml,pH6.0
吖啶橙母液:
用吖啶橙/蒸餾水配成1mg/mL(致癌物,應(yīng)小心),吖啶橙應(yīng)用液0.1ml母液加9.9ml溶液B稀釋。
注意:儀器鞘流系統(tǒng)應(yīng)保持4℃。
氬激光激發(fā)波488nm,紅色熒光為DNA(F>600nm),綠色熒光為RNA或單鏈DNA(F>530nm)
(2)方法
①用含15%血清的PBS配制細(xì)胞懸液,取0.2ml(8×106細(xì)胞/ml),加入0.4ml溶液A,4℃放置45~60秒。
②加1.2ml含吖啶橙的溶液B,室溫2分鐘。
③應(yīng)在加入溶液B后10分鐘內(nèi)進(jìn)流式細(xì)胞儀分析。
注意:①細(xì)胞數(shù)保持恒定;②核酸與吖啶橙的比例;③染色時(shí)間及溫度。
(三)染色法的應(yīng)用
1、變性及雙鏈DNA的鑒別染色
(1)試劑:
HBSS內(nèi)含1000u/ml RNA酶A,0.2mol/LKCl,pH1.35
吖啶橙用0.1mol/L檸檬酸配成5mg/L(16.7μm),0.2mol/L Na2HPO4 緩沖液,pH2.6。
①2×106細(xì)胞懸于1mlHBSS/RNase液中。
②37℃溫育1小時(shí)。
③將0.2ml細(xì)胞懸液(含4×105細(xì)胞始終懸浮于HBSS/RNase)與0.5ml0.2mol/L KCl(pH1.35)混勻,20℃ 30分鐘。
④加2ml吖啶橙染色2分鐘。
⑤綠色熒光(530nm)和紅色熒光(600nm)分別代表細(xì)胞中單鏈及雙鏈DNA含量。
2、DNA與癌基因探針雙標(biāo)記測(cè)定
這種測(cè)定是先用癌基因探針按間接免疫熒光染色法標(biāo)記癌基因表達(dá)產(chǎn)物,然后用PI標(biāo)記DNA,現(xiàn)以研究白血病細(xì)胞增殖與癌基因的關(guān)系說(shuō)明操作步驟:
(1)制備白血病細(xì)胞懸液,用100%甲醇在-20℃固定10分鐘。
(2)取50μl50mg/L的癌基因探針Y13-25(它是一種廣譜單克隆抗體,可特異性地直接與N-ras,Ki-ras和Ha-ras三種癌基因編碼的21Kd蛋白相結(jié)合),4℃作用30~45分鐘。
(3)用PB離心洗滌2次,重懸浮于50μlHBSS中(含0.1%疊氮鈉和2%小牛血清)。
(4)加入50μl1:200兔抗鼠IgG,4℃放置30~45分鐘。
(5)同(3)洗滌后加入50μl1:40的FITC標(biāo)記的羊抗兔IgG,4℃反應(yīng)30~45分鐘。
(6)同(3)洗滌后,細(xì)胞用RNA酶消化,室溫20~30分鐘。
(7)同(3)洗滌后,用PI染液染20分鐘。
(8)同(3)洗滌后,用488nm激發(fā)波長(zhǎng)測(cè)定。FITC染色顯示ras癌基因表達(dá)產(chǎn)物,PI染色顯示DNA含量。
注意事項(xiàng):
①制備樣品時(shí),離心次數(shù)不宜過(guò)多,防止細(xì)胞丟失和凝集;
②細(xì)胞固定時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),不要用冰醋酸、乙醇、苦咪酸及汞固定劑;
③為了降低本底,應(yīng)將細(xì)胞表面未結(jié)合的熒光染料洗凈;
④進(jìn)行雙標(biāo)記沉淀時(shí),應(yīng)盡量選用激發(fā)光譜不接近的熒光色素。
3、以溴化脫氧尿嘧啶(Brdu)和Hoechst33258染料進(jìn)行細(xì)胞周期分析
(1)試劑:
用培養(yǎng)基配制33mg/LBrdu及脫氧細(xì)胞苷26.4g/ml。
染色液:Hoechst33258溶于PBS,細(xì)胞染色24小時(shí)后進(jìn)行分析,據(jù)報(bào)道染色的穩(wěn)定時(shí)間在30分鐘至24小時(shí)之間。
(2)方法:
①將Brdu溶液按1:10加入細(xì)胞培養(yǎng)液中。
②根據(jù)細(xì)胞周期時(shí)間不同,選擇不同時(shí)間培養(yǎng)的細(xì)胞。
③孵育后,搖散細(xì)胞以傳代培養(yǎng)。
④直接用染液重懸細(xì)胞,進(jìn)入流式細(xì)胞儀分析。
Hoechst33258熒光值在410~580nm之間,需用330~360nm紫外光激發(fā)。應(yīng)特異性結(jié)合腺嘌呤-胸腺嘧啶堿基對(duì)。因此,不僅特異性標(biāo)記DNA,亦可標(biāo)記胸腺嘧啶。在細(xì)胞周期分析時(shí),在與細(xì)胞孵育過(guò)程加入Brdu,Brdu可替代DNA中的胸腺嘧啶,因此,處于合成期內(nèi)的細(xì)胞表面上仍保持二倍體狀態(tài),并在分裂后G1峰的半峰處產(chǎn)生一新峰,此項(xiàng)技術(shù)可用于直接測(cè)定細(xì)胞G2期及分裂時(shí)間。
4、Hoechst33342染色活細(xì)胞DNA
(1)試劑:Hoechst 33342,用蒸餾水配成0.25mol/L。
(2)方法:
①制備106/ml細(xì)胞懸液,以Hoechst33342染色,濃度為5~10mg/L ,室溫下20分鐘。
②分析前切勿洗滌細(xì)胞。
Hoechst33342可用作細(xì)胞DNA的活體染料,據(jù)信可在保持細(xì)胞活性的同時(shí),呈現(xiàn)出相當(dāng)好的DNA化學(xué)計(jì)量關(guān)系,激發(fā)波在紫外范圍350~363nm之間,發(fā)射波則在450nm處。
5、以異硫氰酸熒光素(Fluorescein Isothiocyante FIFC)染色蛋白質(zhì)。
(1)試劑:異硫氰酸熒光素(FIFC)用含40mg/LRNase的PBS配成0.1~1.0mg/L濃度。
(2)方法:
①染色前用終濃度70%乙醇固定細(xì)胞,至少18小時(shí)。
②離心固定細(xì)胞,棄去固定液。
③室溫下用FIFC染色細(xì)胞蛋白,30分鐘。
④流式細(xì)胞儀分析,使用氬激光,激發(fā)波長(zhǎng)488nm,熒光發(fā)射波長(zhǎng)515~535nm。
也可于固定細(xì)胞中,以18mg/L(0.1%檸檬酸鹽配制)和0.05mg/L FIFC(含40 mg/L RNase,PBS配制)染色20分鐘以上可對(duì)DNA和蛋白質(zhì)雙重染色,分別呈現(xiàn)紅色熒光(DNA)和綠色熒光(蛋白質(zhì))。
6、熒光素抗體的應(yīng)用
該技術(shù)既可用于檢測(cè)帶有特異性膜抗原的細(xì)胞,可用熒光素或若丹明標(biāo)記單克隆抗體處理上述細(xì)胞;也可用于測(cè)定胞漿中的蛋白質(zhì)(如凋亡BCL-2蛋白,抗病毒蛋白MXA等)。
用磷酸鹽緩沖液Eagle’s MEM稀釋FIFC連接的抗體內(nèi)含0.1%疊氮鈉、2%牛血清。為判定FIFC抗體的zui適度的稀釋濃度,向微量滴定板的細(xì)胞中加入50μl不同濃度的稀釋液,再以熒光顯微鏡確認(rèn)*染色濃度。使用抗人LEU-I抗體分析時(shí),應(yīng)稀釋成5mg/L或0.25mg/L。無(wú)論鼠或人細(xì)胞在2×107濃度時(shí)其存活率應(yīng)在90%以上。
方法:
(1)于微量滴定板加入50μl抗體稀釋度,再加入50μl細(xì)胞懸液,混勻。
(2)冰浴45分鐘,離心滴定板(1500r/min10分鐘)。
(3)棄上清,以培養(yǎng)基100μl洗滌細(xì)胞沉淀2次,每次洗滌后用1500r/min10分鐘,棄上清。
(4)以1ml預(yù)冷的培養(yǎng)基配成1×106細(xì)胞/ml的已染色細(xì)胞懸液,進(jìn)樣前持續(xù)保持冷環(huán)境(4℃)。
目前流式細(xì)胞儀(FCM)已在各學(xué)科中獲得應(yīng)用。
①細(xì)胞生物學(xué):定量分析細(xì)胞周期并分選不同細(xì)胞周期時(shí)相的細(xì)胞;分析生物大分子如DNA、RNA、抗原、癌基因表達(dá)產(chǎn)物等物質(zhì)與細(xì)胞增殖周期的關(guān)系,進(jìn)行染色體核型分析,并可純化X或Y染色體。
②腫瘤學(xué):DNA倍體含量測(cè)定是鑒別良、惡性腫瘤的特異指標(biāo)。近年來(lái)已應(yīng)用DNA倍體測(cè)定技術(shù),對(duì)白血病、淋巴瘤及肺癌、膀胱癌、前列腺癌等多種實(shí)體瘤細(xì)胞進(jìn)行探測(cè)。用單克降抗體技術(shù)清除血液中的腫瘤細(xì)胞。
③免疫學(xué):研究細(xì)胞周期或DNA倍體與細(xì)胞表面受體及抗原表達(dá)的關(guān)系;進(jìn)行免疫活性細(xì)胞的分型與純化;分析淋巴細(xì)胞亞群與疾病的關(guān)系;免疫缺陷病如艾滋病的診斷;器官移植后的免疫學(xué)監(jiān)測(cè)等。
④血液學(xué):血液細(xì)胞的分類、分型,造血細(xì)胞分化的研究,血細(xì)胞中各種酶的定量分析,如過(guò)氧化物酶、非特異性酯酶等;用NBT及DNA雙染色法可研究白血病細(xì)胞分化成熟與細(xì)胞增殖周期變化的關(guān)系,檢測(cè)母體血液中Rh(+)或抗D抗原陽(yáng)性細(xì)胞,以了解胎兒是否可能因Rh血型不合而發(fā)生嚴(yán)重溶血;檢測(cè)血液中循環(huán)免疫復(fù)合物可以診斷自身免疫性疾病,如紅斑狼瘡等。
⑤藥物學(xué):檢測(cè)藥物在細(xì)胞中的分布,研究藥的作用機(jī)制,亦可用于篩選新藥,如化療藥物對(duì)腫瘤的凋亡機(jī)制,可通過(guò)測(cè)DNA凋亡峰,Bcl-2凋亡調(diào)節(jié)蛋白等。
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